最近涉及流式熒光的公司越發(fā)多了起來，相比于化學發(fā)光，它確實有自己獨特的優(yōu)勢，其中最主要的特點就是可以實現1人份試劑的多項目聯合檢測。比如對于自身免疫的項目，化學發(fā)光一般都是單孔單檢，流式熒光可以做到單孔多聯檢，也就是相同用量的血清，化學發(fā)光只檢測了一個項目，流式熒光卻檢出了幾個甚至幾十個的項目。
首先介紹一下最關鍵的磁珠。不同類型的磁珠混在一起，儀器是怎么區(qū)分開的呢？目前有以下幾種類型：
1.靠磁珠的大小加以區(qū)分。
流式涉及兩個概念，FSC（前向散射光）和SSC（側向散射光）。從使用經驗來看，顆粒越大的，FSC就越大；內部結構越復雜的，SSC就越大。怎么理解呢？比如對于FSC，磁珠的顆粒越大，磁珠的投影也就越大，對應的光圈也就越大。比如你用激光去照射一粒面粉和一粒大米，大米的外部光圈肯定會更大。對于SSC，我們可以想象一下，你用激光照射一堆透明的玻璃球，和照射一堆內部鑲嵌了小星星的玻璃球，肯定后者的側面散射光信號更強。
那好了，流式儀器一般會用激光照射并收集FSC和SSC，做二維坐標圖，根據圖像來分別不同的磁珠。但是有一個問題，如果磁珠的制備工藝相似，那么它們的內部結構就類似，導致SSC都普遍接近，最終起到區(qū)分作用的只有FSC這個指標。但是我們希望不同項目的磁珠粒徑盡量接近（4-6um），反應才比較均衡，所以僅僅靠FSC和SSC來區(qū)分的磁珠，可用性很小。
2.摻入熒光素。
有的公司只摻入了一種熒光素，比如蘇州為度新開發(fā)的流式磁珠，首先靠FSC區(qū)分4um和5um的兩個群體，然后每個群體又摻入了9個梯度的熒光素APC，最終做出了18重磁珠，這是一種開發(fā)思路；但是我們上面講到了，磁珠的粒徑最好是一致的，所以像是深圳唯公的磁珠，就摻入了兩種熒光素，也就是磁珠的粒徑都一樣，靠的是兩種熒光素的摻入比例來進行區(qū)分，這與luminex的開發(fā)思路是一致的，這樣做出來的磁珠種類更多，也更利于免疫檢測。
然后再講一下反應模式。
對于自身免疫和過敏原這種抗體檢測項目，一般都是采用的間接法。也就是磁珠標記抗原，檢測抗體為PE（藻紅蛋白）標記的抗人IgM或抗人IgG或抗人IgE等。
也許有人會問，能不能采用捕獲法呢？標記抗人Ig抗體，然后用不同的蛋白標記PE來進行檢測？這樣是不行的。雖然磁珠仍然可以分開，但是它們都可以抓住不同類型的Ig抗體，可以出現一陽全陽的局面，這顯然是不可行的。
對于雙抗夾心的項目，同樣是將標記抗體分別標記不同的磁珠，對于檢測抗體，一般有兩種操作：
一是將各個抗體分別標記PE，然后進行混合；
二是將各個抗體分別標記Biotin，最終借助SA-PE進行最終的檢測。
一的難點是抗體與PE的標記，這對于很多公司都是一個技術壁壘，感覺操作容易產生很大的批間差。
二的特點是生物素標記比較簡單，但是因為借助了SA-PE，所以反應步驟會增加，反應時間會延長，對于反應時間有要求的項目，則需要斟酌一下。
流式熒光與化學發(fā)光在研發(fā)上的區(qū)別？
不管是流式磁珠還是發(fā)光用的磁珠，目前大部分都還是羧基磁珠，所以在標記工藝方面來說幾乎是一樣的，只不過在數量方面會有較大差別。流式磁珠在使用的時候一般按照個數計量（如1×10^5個/mL），發(fā)光磁珠則一般按照重量單位mg/mL進行計量，所以發(fā)光的磁珠和抗體消耗是相對較大的。但是我們得相信，量的積累一定會保證質的提升，所以發(fā)光試劑在準確度方面一般是優(yōu)于流式熒光的。
并且由于流式磁珠是逐個地去測試熒光值，每個磁珠的熒光值難免存在差異，熒光結果的報告也會有不同的形式，可以用平均值，也可以采用中位數，但是這個數據也是會隨著圈圈的大小和位置不斷地變化。
況且，由于微球反應完成后會出現聚集的情況，反應前和反應后的位置會發(fā)生位移，甚至有的出現明顯地分散，導致距離太近的微球難以區(qū)分彼此，導致結果的誤判。比如下圖的例子，對于黃色標注的區(qū)域，我們很難界定微球的隸屬關系，如果其中一個項目是陰性，一個項目是陽性，圈的位置稍有差池，兩個項目的可能就都報成了陽性。
2023-9-8 |
